還原糖檢測的顏色變化,還原糖測定中顯色反應的原理

2025-05-27 14:45:08 字數 3304 閱讀 6940

1樓:鹹軒律森莉

高中的生物書中提到斐林試劑檢驗還原糖,按照芹尺書上的方法配製的斐林試劑是渾衝轎濁的,加熱後除了磚紅色以外還會出現黑色沉澱,原因是氫氧化銅受熱分解為氧化銅。

而如果用我的方法,(從斐林試劑本質中獲得的嫌判高靈感),取試管加一滴硫酸銅,再加過量鹼充分振盪至溶液呈現澄清的藍色溶液[cu(oh)4]2-.這時加入葡萄糖溶液,溶液迅速變色為絳藍紫色,這時多羥基物質與斐林的特徵反應。再水浴加熱,一齣現磚紅色的微粒出現將極其明顯。

一般是先從液麵開始出現,最終整個試管是均勻的磚紅色。

還原糖測定中顯色反應的原理

2樓:帳號已登出

檢驗還原糖的原理: 還原糖中的醛基(-cho)在加熱條件下能將cu(oh)2中的銅離子還原成亞銅離子,從而生成磚紅色的cu2o沉澱物。

新配置的斐林試劑。

是氫氧化銅溶膠,可溶性還原糖中含有醛基(-cho)具有弱還原性,在水浴加熱的情況下可與氫氧化銅發生氧化還原如冊嫌反應。

把cu2+還原成磚紅色的cu2o(氧化亞銅),如果不用斐林試劑,採用班氏試劑也可以出現顏色變化。

標定費林氏液溶液。

吸取費林試劑。

甲液及費林試劑乙液,置於150ml錐形瓶中(甲液與乙液混合可生成氧化亞銅沉澱,因此,操作時應將甲液加入乙液,使開始生成的姿洞氧化渣手亞銅沉澱重溶),加水10ml,玻璃珠2粒,從滴定管滴加約9ml葡萄糖。

標準溶液,控制在2min內加熱至沸,趁沸以每兩秒1滴的速度繼續滴加葡萄糖標準溶液,直至溶液藍色剛好褪去並出現淡黃色為終點。

以上內容參考:百科-食品中還原糖的測定。

還原糖檢測為什麼不能用顏色深的溶液

3樓:

摘要。還原糖檢測不能用顏色深的溶液,因為會干擾檢測結果。

還原糖檢測不能用顏色深的溶液,因為會干擾檢測結果。

您能補充下嗎,我有點不太理解。

還原糖是指在酸性條件下具有被氧化還原反應(還原作用)能拆旅力的單糖、雙糖和少量三糖的總量。在糖水中,如果採用顏色深的溶液去檢測糖含量,很可能會掩蓋住糖的顏色反應,影響檢測結果。另外,高度濃縮的深色溶液容易導致測試結果偏高,且可能使檢測結果產生不確定性。

因此,還原糖檢測需要使用正御攔清澈的溶液,並且在嚴格按照方法進行操作的情舉胡況下才能得到準確的結果。

檢測生物組織中的還原糖實驗中,若檢測液不變色?

4樓:一起去偷公尺

在檢測生物組織中的還原糖實驗中,如果檢測液沒有變色,可能是以下幾個原因:

檢測液失效:檢測液孝激可能已經過期或儲存不當,導致試劑的活性降低,不能正確地檢測還原糖。

樣品中沒有還原糖:還原糖是生物體內一種常見的糖類,但並不是所有的糖類都是還原糖,如果樣品中沒有還原糖,那麼檢測液也不會發生變色反應。

檢測方法不正確:檢測還原糖的方法有多種,如費林試劑法、本特試劑法、尿酸銅法等,不同的方法餘高可能有不同的操作步驟和條件,如果操作不正確,可能導致檢測結果不巧毀襪準確。

樣品的處理不當:樣品的處理過程中可能存在一些干擾因素,如酶的活性、ph值、離子濃度等,這些因素可能會影響檢測結果。

如果檢測液沒有變色,可以檢查試劑的有效期和儲存條件是否正確,確認樣品中是否含有還原糖,並根據檢測方法的要求重新操作,如果問題仍然存在,可以考慮尋求專業人員的幫助。

糖色怎麼判斷是否變質(怎麼判斷糖色是否成功)

5樓:上班不摸魚

<>1、看:白砂糖外觀乾燥鬆散、潔白、有光澤,平攤在白紙上不應看到明顯的黑點,按顆粒有粗粒、大粒、中粒、細粒之分,顆粒均勻,晶粒有閃光,輪廓分明;綿白糖晶粒細小,均勻,顏色潔白,較白砂糖易溶於水,適用於一般飲品、點心及其他糖制食品;赤砂糖呈晶粒狀或粉末狀,乾燥而鬆散,不結塊,不成團,無雜質,其水溶液清晰,無沉澱,無懸浮物,顏色有紅褐、青褐、黃褐、赤紅、金黃、淡黃、棗紅等多種;冰糖呈均勻的清白色或黃色,半透明,有結晶體光澤,無明顯的雜質。

2、聞:白砂糖、綿白糖、冰糖、方糖用鼻聞有一種清甜之香,無任何怪異氣味。赤砂糖、冰糖則碼悶保留了甘蔗糖汁的原汁原味,特別是甘蔗的特殊清香味。

3、嘗:白砂糖溶在水中無沉澱和絮凝物、懸浮物出現,嘗其溶液味清甜,無任何異味;綿白糖在舌部的味蕾上糖分濃度高,味覺感到的甜度比白砂糖大;赤砂糖、冰糖則口味濃甜帶鮮,微有糖蜜味;冰糖、方糖則質地純甜,無異味。纖穗。

4、摸:用幹手摸時不會有糖粒沾在手上,松遲豎彎散,說明含水分低,不易變質,易於儲存。

鑑別還原糖的及現象

6樓:折儂殳安波

1)備如①還原糖與斐林試劑。

在水浴加熱的條件下產生磚紅色沉澱;

澱粉遇碘液變藍.

脂肪需要使用蘇丹ⅲ(蘇丹iv)染色,使用酒精洗去浮色以後在顯微鏡下觀察,可以看到橘黃色(紅色)的脂肪顆粒。

蛋白質與雙縮脲試劑。

產生紫色反應;

甲基綠和吡羅紅對dna、rna的親和力不同:利用甲基綠、吡羅紅混合染色劑將細胞染色簡陵。

故答案為:斐林試劑 磚紅色沉澱 藍色攔滾戚 橘黃色 雙縮脲試劑 紫色 甲基綠 綠色 吡羅紅 紅色。

樣品有顏色可以用dna法測定還原糖嗎?

7樓:小周高等教育**答疑

最好還是過濾一下,不然直接測的話,讀取示數很不穩定。另外,分光光度計使用時要求溶液可以有顏色,但是必須是澄清的。

實驗步驟。1. 標準曲線的制:

各管混合後加塞,於沸水浴中加熱15min。取出後自來水冷卻,1500rpm離心15min。取上清液,用分光光度計在590nm波長下比色,以蒸餾水作對照,讀取吸光度用空白管的吸光度與不同濃度糖的各管的吸光度之差為橫座標,對應的糖含量為縱座標,繪製標準曲線。

2. 樣品中還原糖的提取:取新鮮的植物樣品洗淨、擦乾、剪碎,稱取,放入研缽中研磨至糊狀,用水洗入250ml容量瓶中游賀。

當體積近150ml左右時,加2~3滴甲基紅指示劑,如呈紅色,可用 的naoh中雹遲和至微黃色。若用風乾樣品,可稱取乾粉,先在燒杯中用少量水溼潤,然後用水洗入250ml容量瓶中,如顯酸性,可用上法中和。將容量瓶置於80℃的恆溫水浴中保溫30min,其間搖動數次,以便將還原糖充分提取出來。

對含蛋白質較多的樣品,此間可加10%pb(ac)2,除去蛋白質,至不再產生白色絮狀沉澱時,加飽和na2so4除去多餘的鉛離子。30min後取出冷卻,定容至刻度,搖勻後過濾待測。

3. 樣品測定:吸取6ml待測液,加4ml斐林試劑,其它操作與標準曲線相同,在590nm波長下讀取吸神肆派光度。

以不含樣品的空白管的吸光度減去樣品管的吸光度,在標準曲線上查出糖含量。

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