1樓：網友
酶標儀雙波長讀板時同一塊板會出現一些資料，以bio-rad酶標儀為例，當設定雙波長後，結果會出現raw data和result data，raw data是波長的原始資料，而result-data是波長減去參比波長後的資料，計算抑制率應以result data為依據。設定參比波長是在波長的基礎上降低本底及非特異性背景的干擾。
2樓：13249187519證
實驗中波長的選擇主要依賴於你要測的樣品。樣品在不同的波長下，對光的吸收值也不同，但都有乙個吸收峰，一般選擇吸收峰時的波長進行實驗。比如同樣是mtt法做細胞毒性實驗，就有使用490nm和570nm兩種波長選擇，如果使用了dmso作為試劑，在溶解後呈紫（紅）色，在490nm有最大吸收值；而對於sds和酸化異丙醇，則選用570nm（655nm作為參考波長）。
酶標儀波長設定還要看你用的是什麼酶標儀，如果是光柵式單色器（可以1nm步進調節），就可以直接設定吸收峰的波長；如果是濾光片式單色器，因為受濾光片波長限制，有時你就需要選接近使用波長的濾光片，比如655nm，你就可能選用650nm的濾光片。
3樓：淪低僥
1l，人家沒問你酶標儀是什麼，人家有說明書好吧？混分也得有點素質啊。 lz，酶標儀測定elisa比luciferase方便多了，因為不用加樣啊。
你在96孔板上顯色之後，加終止液，然後直接在機器上設好吸光度就測了，一塊板1分鐘就測完了。 比如，你是hrp-tmb顯色，就設定吸光度為450nm，shake 5秒，然後每個孔1秒，測下去就好了。滿意。
普通酶標儀測定時為什麼選擇雙波長測定
4樓：匿名使用者
普廳友亮通酶標儀測定時為什麼選擇雙波長測定。
酶標儀判讀結果是每個孔吸光度的值，所以一般可以分為單波長和雙波長測量，用單波長測量時，96孔微板會留乙個空白孔。因為孔的吸光度值包括了孔壁+實驗體，為了得出實驗體的值，必須留乙個空白告消孔測試出孔壁值，結果扣減。但由於每個孔不可能完全一樣，科學來講不能用乙個孔吸光度值代表所有的，所以酶標儀才扮寬有了雙波長。
雙波長的意思是，會有兩次不同波長來測總值，第二個波長只測孔壁吸光度值，結果每個孔各自扣減得出結果。理論上結果更為科學和準確。市面上單波長儀器有hebe酶標儀，進口的有sunrise酶標儀。
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